① ConA誘導的細胞培養(yǎng)上清（ConA上清）：于24孔培養(yǎng)板孔中加入.25×06/ml鼠脾細胞和2.5μg ConA，置37℃5%CO2 溫箱培養(yǎng)24～48h，離心收集上清，以CTLL-2或HT-2細胞檢測其IL-2含量，分裝，置-70℃保存?zhèn)溆谩?/div>
② 繼發(fā)MLC培養(yǎng)上清：取C57BL/6鼠脾細胞2.5×07 （反應細胞）與等量經過照射（2000rad）的DBA/2鼠脾細胞（刺激細胞）在20ml培養(yǎng)液中混合，置37℃，5%CO2溫箱培養(yǎng)0～4d，作為原代MLC。離心收集原代MLC細胞，用培養(yǎng)液洗次。取6×06 原代細胞與2.5×07 經過照射的脾細胞混合，同上述條件培養(yǎng)36h，收集培養(yǎng)上清，置-70℃保存?zhèn)溆谩＜毎鳛橐韵略囼炗玫睦^發(fā)MLC細胞。
③ EL-4上清的制備：于24孔板加入06 /ml EL-4鼠淋巴瘤細胞和20ng PMA，培養(yǎng)4h。收集細胞，以培養(yǎng)液洗3次，加入培養(yǎng)液后繼續(xù)培養(yǎng)36h。收集上清，置-70℃保存?zhèn)溆谩?/div>
操作步驟
. 于96孔培養(yǎng)板孔中加入06 /00μl經過照射的同種脾細胞。
2. 取繼發(fā)MLC細胞，用含ConA或MLC上清的培養(yǎng)液作有限稀釋至～0個細胞/ml，于步驟（）板孔中加入50μl細胞懸液。培養(yǎng)4d后各孔加入50μl ConA或MLC上清和50μl培養(yǎng)液。繼續(xù)培養(yǎng)7～0d。
3. 用5Cr釋放試驗測定細胞毒活性，以篩選同種反應CTL與Th。若細胞毒試驗陰性，可以增殖試驗測定Th活性。亦可通過IL-2、IL-4的產生或CD4、CD8的表達進行篩選。
4. 鑒定同種反應性T細胞的特征，如細胞毒活性、增殖反應或某些淋巴因子的分泌等。
5. 克隆細胞的維持:將2.5×04 ～×05 細胞轉種24孔培養(yǎng)板孔中，同時加入×06 經過照射的同種脾細胞和含條件液的培養(yǎng)液，每周傳代一次。
詳情請看：同種反應性Th和CTL克隆的制備
